Свежий номер
В настоящее время с развитием геномных технологий становится все более возможным установить в геноме винограда гены устойчивости к патогенам и перейти от традиционной генеративной селекции сортов винограда к маркерной селекции (MAS) на уровне генов и геномов. По сравнению с традиционными подходами применение MAS в контексте фонового отбора является своего рода прорывом по обеспечению доступности ценных признаков диких видов в программах селекции в управляемые сроки. MAS позволяет целенаправленно пирамидировать локусы устойчивости. Комбинация различных локусов резистентности представляет интерес не только в отношении степени резистентности, но и для ожидания более высокой устойчивости. Применение MAS также делает возможным выбор подходящих родителей с оптимизированным пирамидальным потенциалом. Одним из направлений селекционной работы по созданию новых сортов, стала селекция на устойчивость филлоксере, оидиуму и милдью. Однако предубеждения, касающиеся качества вин новых устойчивых сортов препятствовали выходу их на рынок. Эти предубеждения до сих пор популярны и могут быть причиной того, что большая часть винодельческого сообщества игнорирует существенный прогресс в селекции и придерживается использования на практике хорошо известных сортовых вин или купажей. Новым является необходимость повышения устойчивости виноградарства и адаптации к изменяющимся условиям окружающей среды. Изменение климата с его экстремальными погодными условиями уже вызвала необходимость смены сортов во многих винодельческих регионах. Поэтому в дверь стучится смена парадигмы: новые сорта (PIWI) против традиционных сортов для адаптированного к климату и устойчивого виноградарства.
2. Власов В.В., Мулюкина Н.А., Тулаева М.И., Ковалева И.А., Чисников В.С., Конуп Л.А., Карастан О.М., Лосева Д.Ю. Применение ДНК-технологий в ННЦ «ИВиВ им. В.Е. Таирова» // Русский виноград. 2015. Т. 1. С. 55-62. EDN: VEDGKZ
3. Волынкин В.А., Зленко В.А., Лиховской В.В. Селекция винограда на бессемянность, крупноягодность и раннеспелость на полиплоидном уровне // Виноградарство и виноделие. 2009. Т. 39. С. 9-13. EDN: VKAEGX
4. Голодрига П.Я., Трошин Л.П. Биолого-техническая программа создания комплексно-устойчивых высокопродуктивных сортов винограда // Перспективы селекции и генетики винограда на иммунитет. Киев: Наукова думка. 1978. С. 259-264.
5. Ильницкая Е.Т., Петров В.С., Нудьга Т.А., Ларькина М.Д., Никулушкина Г.Е. Совершенствование сортимента и методов селекции винограда для нестабильных климатических условий юга // Виноделие и виноградарство. 2016. № 4. С. 36-41. EDN: XILYFD
6. Клименко В.П. Научные основы создания исходного материала и выведения новых высокопродуктивных сортов винограда: дис. … д-ра. с.-х. наук / ВННИИВиВ «Магарач». Ялта, 2014. 402 c. EDN: YRDBUT
7. Кострикин И.А., Сьян И.Н., Майстренко Л.А., Майстренко А.Н. Межвидовая гибридизация винограда // Виноделие и виноградарство. 2002. № 1. С. 36-38. EDN: WECQUP
8. Лиховской В.В. Методология совершенствования генетического разнообразия и сортимента винограда. ВННИИВиВ «Магарач». Симферополь, 2019. 367 с. EDN: YVEMVR
9. Матвеева Т.В., Павлова О.А., Богомаз Д.И., Демкович Л.А., Лутова А.Е. Молекулярные маркеры для видоидентификации и филогенетики растений // Экологическая генетика. 2011. Т. 9, № 1. С. 32-43. EDN: NUDWXN
10. Рисованная В.И. Молекулярно-генетическое кодирование микросателлитных профилей сортов винограда // Магарач. Виноградарство и виноделие. 2008. № 4. С. 9-10. EDN: ZDCCVL
11. Рисованная В.И., Гориславец С.М. Молекулярно-генетические маркеры в селекции винограда // Научные труды Государственного научного учреждения Северо-Кавказского зонального научно-исследовательского института садоводства и виноградарства Российской академии сельскохозяйственных наук. 2013. Т. 1. С. 174-180. EDN: RBXVFR
12. Смарагдов М.Г. Тотальная геномная селекция с помощью SNP как возможный ускоритель традиционной селекции // Генетика. 2009. Т. 45, № 6. С. 725-728. EDN: KMLMWR
13. Сулимова Г.Е. ДНК-маркеры в генетических исследованиях: типы маркеров, их свойства и области применения // Успехи современной биологии. 2004. Т. 124, № 3. С. 260-271. EDN: OXMHRV
14. Тихонова Н.Г., Хлесткина Е.К. Генетическое редактирование для улучшения плодовых и ягодных культур // Садоводство и виноградарство. 2019. № 4. С. 10-15. https://doi.org/10.31676/0235-2591-2019-4-10-15. EDN: SEDBIE
15. Хлесткина Е.К. Молекулярные методы анализа структурно-функциональной организации генов и геномов высших растений // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2011. Т. 15, № 4. С. 757-768. EDN: OOZBTB
16. Хлесткина Е.К. Молекулярные маркеры в генетических исследованиях и в селекции // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2013. Т. 17, № 4-2. С. 1044-1054. EDN: RVGWOT
17. Altukhov Yu.P., Salmenkova E.A. DNA polymorphism in population GENETICS // Genetika. 2002. Vol. 38, № 9. P. 1173-1195. EDN: MPNTEB
18. Barker C., Donald L., Pauquet T., Ratnaparkhe J., Bouquet A., Adam-Blondon A.-F., Thomas M.R., Dry I. Genetic and physical mapping of the grapevine powdery mildew resistance gene, Run1, using a bacterial artificial chromosome library // Theoretical and Applied Genetics. 2005. Vol. 111. P. 370-377. https://doi.org/10.1007/s00122-005-2030-8
19. Bavaresco L. Progress in grapevine breeding for disease resistance // Vignevini. 1990. Vol. 17. P. 29-38.
20. Bavaresco L. Attualita e prospettive sui nuovi vitigni resistenti alle malattie // L’Enologo. 2017. Vol. 10. P. 56-59. http://hdl.handle.net/10807/111731
21. Bavaresco L., Squer C. Outlook on disease resistant grapevine varieties // BIO Web of Conferences. 2022. Vol. 44. P. 06001. https://doi.org/10.1051/bioconf/20224406001
22. Bellin D., Peressotti E., Merdinoglu D., Wiedemann-Merdinoglu S., Adam-Blondon A.-F., Cipriani G., Morgante M., Testolin R., Di Gaspero G. Resistance to Plasmopara viticola in grapevine ‘Bianca’ is controlled by a major dominant gene causing localized necrosis at the infection site // Theoretical and Applied Genetics. 2009. Vol. 120. P. 163-176. https://doi.org/10.1007/s00122-009-1167-2
23. Buonassisi D., Colombo M., Migliaro D., Dolzani C., Peressotti E., Mizzotti C., Velasco R., Masiero S., Perazzolli M., Vezzulli S. Breeding for grapevine downy mildew resistance: a review of «omics» approaches // Euphytica. 2017. Vol. 213, № 103. https://doi.org/10.1007/s10681-017-1882-8
24. Cattell H., Miller L. The Wines of the East. III. Native American Grapes. Lancaster: L&H Photojournalism. 1980.
25. Dalbo M.A., Ye G.N., Weeden N.F., Wilcox W.F., Reisch B.I. Marker assisted selection for powdery mildew resistance in grapes // Journal of the American Society for Horticultural Science. 2001. Vol. 126. P. 83-89. https://doi.org/10.21273/JASHS.126.1.83
26. De Rosso M., Panighel A., Migliaro D., Possamai T., De Marchi F., Velasco R., Flamini R. The pivotal role of high-resolution mass spectrometry in the study of grape glycosidic volatile precursors for the selection of grapevines resistant to mildews // Journal of Mass Spectrometry. 2023. Vol. 58. P. e496. https://doi.org/10.1002/jms.4961
27. Eibach R., Töpfer R., Hausmann L. Use of genetic diversity for grapevine resistance breeding // Mitteilungen Klosterneuburg. 2010. Vol. 60. P. 332-337.
28. Eibach R., Töpfer R. Progress in Grapevine Breeding // Acta Horticulture. Proceedings of the. X International Conference on Grapevine Breeding and Genetics, Geneva, New York, USA. 2014. Vol. 1046. P. 197-209. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1046.25
29. Fischer B.M., Salakhutdinov I., Akkurt M., Eibach R., Edwards K.J., Töpfer R., Zyprian E. Quantitative trait locus analysis of fungal disease resistance factors on a molecular map of grapevine // Theoretical and Applied Genetics. 2004. Vol. 108. P. 501-515. https://doi.org/10.1007/s00122-003-1445-3
30. Frommer B., Holtgräwe D., Hausmann L., Viehöver P., Huettel B., Töpfer R., Weisshaar B. Genome sequences of both organelles of the grapevine rootstock cultivar ‘Börner’ // Microbiology Resource Announcements. 2020. Vol. 9. https://doi.org/10.1128/mra.01471-19
31. Frommer B., Hausmann L., Holtgräwe D., Viehöver P., Hüttel B., Reinhardt R., Töpfer R., Weisshaar B. A fully phased interspecific grapevine rootstock genome sequence representing V. riparia and V. cinerea and allele-aware annotation of the phylloxera resistance locus Rdv1 // Preprint. 2022. https://doi.org/10.1101/2022.07.07.499180
32. Fort F., Lin-Yang Q., Ricardo Suarez-Abreu L., Sancho-Galan P., Miquel Canals J., Zamora F. Study of Molecular Biodiversity and Population Structure of Vitis vinifera L. ssp. vinifera on the Volcanic Island of El Hierro (Canary Islands, Spain) by Using Microsatellite Markers // Horticulturae. 2023. Vol. 9, N 12. Р. 1297. https://doi.org/10.3390/horticulturae9121297
33. Hausmann L., Eibach R., Zyprian E., Töpfer R. Sequencing of the Phylloxera Resistance Locus Rdv1 of Cultivar ‘Börner’ // Acta Horticulturae. 2014. Vol. 1046. P. 73-78. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1046.7
42. Peressotti E., Wiedemann-Merdinoglu S., Delmotte F., Bellin D., Di Gaspero G., Testolin R., Merdinoglu D., Mestre P. Breakdown of resistance to grapevine downy mildew upon limited deployment of a resistant variety // BMC Plant Biology. 2010. № 10. P. 147. https://doi.org/10.1186/1471-2229-10-147
44. Riaz S., Krivanek A.F., Xu K., Walker M.A. Refined mapping of the Pierce’s disease resistance locus, PdR1, and Sex on an extended genetic map of Vitis rupestris × V. arizonica // Theoretical and Applied Genetics. 2006. Vol. 113. P. 1317-1329. https://doi.org/10.1007/s00122-006-0385-0
57. Wang Z., Wang S., Li D., Zhang Q., Li L., Zhong C., Liu Y., Huang H. Optimized paired-sgRNA/Cas9 cloning and expression cassette triggers high-effiency multiplex genome editing in kiwifruit // Plant Biotechnology Journal. 2018. Vol. 16. P. 1424-1433. https://doi.org/10.1111/pbi.12884
Разработана методика проведения испытаний на отличимость, однородность и стабильность по перспективному и малораспространенному лекарственному растению – родиоле розовой (Rhodiola rosea L.). Для разработки методики были изучены коллекция образцов разного географического происхождения, полученных по делектусу (также из экспедиций, по обмену): из Якутского ботанического сада (Институт биологических проблем криолитозоны Сибирского отделения РАН, г. Якутск); из Монреальского ботанического сада (г. Монреаль, Квебек, Канада); из ботанического сада СГУ им. Питирима Сорокина (Сыктывкар, Республика Коми); из Ботанического сада Самарского университета (г. Самара); из Les Serres Botaniques (г. Гренобль, Франция); из Полярно-Альпийского ботанического сада им. Н.А. Аврорина (ПАБСИ) (г. Кировск); из Ботанического Сада-Института ПГТУ (г. Йошкар-Ола); из ботанического сада г. Инсбрук (Австрия) и культивируемая популяция в Ботаническом саду ФГБНУ ВИЛАР (Алтай, 1989). Изучали морфологию растений, побегов, листьев, цветов, соцветий и плодов. На базе полученных данных были составлены ранжированные ряды по признакам изменчивости и определены 12 параметров для таблицы признаков, по которым можно производить апробацию сортовых образцов родиолы. Затем на базе таблицы признаков была составлена анкета сорта, включающая наиболее отличительные признаки. Методика иллюстрирована рисунками архитектоники побегов, формой листьев, расположения зубчиков по краям листа и формой соцветий для более точного описания изучаемых признаков сорта.
2. Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Том 1. Сорта растений (официальное издание). М.: ФГБНУ «Росинформагротех», 2023. С. 140. https://gossortrf.ru/upload/iblock/bbb/j9r93w3z4qwldvy93asvrelhfo927c3e.pdf
3. Полетаева И.И., Володина С.О., Володин В.В. Изучение индивидуальной изменчивости растений Rhodiola rosea L. в целях отбора ценных генотипов для микроклонального размножения // Известия Самарского научного центра РАН. 2013. Т. 15, № 3-2. С. 769-775. EDN: RVSHRJ
4. Савченко О.М., Цыбулько Н.С., Саматадзе Т.Е. Сравнительное изучение представителей различных популяций вида Sedum roseum (L.) Scop. при возделывании в культуре // Юг России: экология, развитие. 2023. Т. 18, № 2. С. 21-32. https://doi.org/10.18470/1992-1098-2023-2-21-32. EDN: DZCJYO
5. Самбуу А.Д., Шауло Д.Н., Зыкова Е.Ю. Биоэкологические особенности и продуктивность Rhodiola rosea L. (Crassulaceae) в Республике Тыва // Растительный мир Азиатской России: Вестник Центрального сибирского ботанического сада СО РАН. 2021. Т. 14, № 4. С. 277-283. https://doi.org/10.15372/RMAR20210402. EDN: XJMGTP
6. Фролов Ю.М., Полетаева И.И. Родиола розовая на европейском Северо-Востоке. Екатеринбург: УрО РАН, 1998. 192 с. EDN: RQCQBH
7. Хмелева И.Р. Биоэкологические особенности родиолы розовой во флоре Республики Алтай // Информация и образование: границы коммуникаций. 2023. № 15. С. 17-18. https://doi.org/10.59131/2411-9814_2023_15(23)_17. EDN: XGOALV
8. Erst A.A., Petruk A.A., Zibareva L.N., Erst A.S. Morphological, histochemical and biochemical features of cultivated Rhodiola rosea (Altai mountains ecotype) // Contemporary Problems of Ecology. 2021. Vol. 14, № 6. Р. 701-710 https://doi.org/10.1134/S1995425521060135. EDN: LPQVGC
9. Peschel W., Kump A., Horvath A., Csupor D. Age and harvest season affect the phenylpropenoid content in cultivated European Rhodiola rosea L. // Industrial Crops and Products. 2016. Vol. 83. Р. 787-802. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2015.10.037. EDN: WVDOYP
10. Rhodiola rosea L. // The World Flora Online http://www.worldfloraonline.org/taxon/wfo-0000399342.
11. RTG/01/3 Общее введение по испытанию на отличимость, однородность и стабильность и составлению описаний от 22.07.2002 г. № 12-06/52 // Официальный бюллетень Госкомиссии. М., 2002. № 6.
12. Harmonization of states of expression and notes of characteristics appearing in the UPOV test guidelines // International Union for the Protection of New Varieties of Plants (UPOV) https://www.upov.int/edocs/mdocs/upov/en/tc_27/tc_27_5.pdf
Перспективным направлением в садоводстве считается селекция яблони на полиплоидном уровне, обеспечивающая получение триплоидных, более адаптивных к условиям современной экосистемы, высококачественных сортов, необходимых для выращивания в интенсивных садах. Для создания триплоидов необходим широкий набор исходных тетраплоидных форм. При использовании тетраплоидов в качестве опылителей следует учитывать особенности формирования мужских гамет, что позволяет правильно подобрать исходные формы для скрещивания и наметить необходимый объем гибридизации. В работе изложены результаты по исследованию мейотического деления тетраплоидной формы яблони 34-21-39 [30-47-88 [Либерти × 13-6-106 (с.с. Суворовец)] (4х) × Краса Свердловска (2х)]]. Деления у основной массы клеток на всех стадиях мейоза правильные. Количество отклонений небольшое. Процент аномалий на всех стадиях деления составил от 11,3 до 22,5 %. Отмечены забегания и отставания хромосом, выбросы отдельных хромосом в цитоплазму микроспороцита, мосты между анафазными группами. На стадии тетрад присутствуют полиады: пентады, гексады, гептады. На заключительной стадии мейоза формируется 77,7 % правильных тетрад. Тетраплоид 34-21-39 (4х), несмотря на наличие аномальных картин деления в ходе микроспорогенеза, имеет высокий процент визуально нормальной жизнеспособной пыльцы, что подтверждается скринингом числа хромосом у гибридных растений, полученных с участием этой формы в качестве опылителя. В результате скрещивания диплоидного сорта Гирлянда с тетраплоидом 34-21-39 (4х) выявлено, что 80,0 % гибридного потомства имеют тройной набор хромосом (2n = 3x = 51). Следовательно, тетраплоидную форму яблони 34-21-39 (4х) целесообразно использовать в качестве опылителя в селекционных программах с применением полиплоидов.
2. Горбачева Н.Г. Цитоэмбриологическая оценка тетраплоидных форм яблони для селекции // Селекция и сорторазведение садовых культур. 2019. Т. 6, № 1. С. 31-35. EDN: FEWGBU
3. Горбачева Н.Г., Клименко М.А. Цитологический контроль гибридных сеянцев, исходных форм яблони в селекции на полиплоидном уровне // Современное садоводство. 2019. № 1. С. 25-31. https://doi.org/10.24411/2312-6701-2019-10103. EDN: SDZLPG
4. Гревцова Н.А. Сравнительно-эмбриологическое исследование некоторых представителей родов Malus Mill. и Pyrus L.: автореф. дис. ... канд. биол. наук. Москва, 1974. 23 с.
9. Седов Е.Н., Серова З.М., Янчук Т.В., Корнеева С.А. Триплоидные сорта яблони селекции ВНИИСПК для совершенствования сортимента (популяризация селекционных достижений). Орел: ВНИИСПК, 2019. 28 с. EDN: ENMEHF
10. Седов Е.Н., Седышева Г.А., Макаркина М.А., Левгерова Н.С., Серова З.М., Корнеева С.А., Горбачева Н.Г., Салина Е.С., Янчук Т.В., Пикунова А.В., Ожерельева З.Е. Инновации в изменении генома яблони. Новые перспективы в селекции. Орел: ВНИИСПК, 2015. 336 с. EDN: XXPBED
11. Седов Е.Н., Седышева Г.А., Серова З.М., Янчук Т.В. Новые триплоидные сорта яблони, иммунные к парше // Наше сельское хозяйство. 2020. № 1. С. 110-113. EDN: QPYKBZ
12. Седов Е.Н., Янчук Т.В., Корнеева С.А. Ценные доноры диплоидных гамет для создания триплоидных сортов яблони // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2020. № 3. С. 13-17. https://doi.org/10.30850/vrsn/2020/3/13-17. EDN: PJMTPM
13. Седов Е.Н., Янчук Т.В., Корнеева С.А. Новые Диплоидные, триплоидные, иммунные к парше и колонновидные сорта яблони в совершенствовании сортимента // Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2022. № 1. С. 25-31. https://doi.org/10.30850/vrsn/2022/1/25-31. EDN: LNMPZP
14. Седышева Г.А. Особенности редукционного деления у триплоидной формы яблони 25-37-46 // Современное садоводство. 2013. № 1. С. 1-7. EDN: SEILRV
15. Седышева Г.А. Сравнительная характеристика микроспорогенеза у двух диплоидных сортов яблони // Адаптивный потенциал и качество продукции сортов и сорто-подвойных комбинаций плодовых культур: материалы международной научно-практической конференции. Орел: ВНИИСПК, 2012. С. 225-230. EDN: YHARBZ
16. Седышева Г.А., Горбачева Н.Г. Особенности формирования мужского гаметофита у новой полиплоидной формы яблони // Селекция и сорторазведение садовых культур. Орел: ВНИИСПК, 2007. С. 183-188. EDN: YHALHF
17. Седышева Г.А., Горбачева Н.Г., Мельник С.А. Цитоэмбриологическая оценка тетраплоидов яблони для гетероплоидных скрещиваний // Вестник Орловского государственного аграрного университета. 2015. № 6. С. 55-60. EDN: VSKHNF
18. Седышева Г.А., Горбачева Н.Г. Микроспорогенез и развитие мужского гаметофита у колонновидной формы яблони Орловская Есения // Современное садоводство. 2016. № 2. С. 77-81. EDN: WEFKWB
19. Седышева Г.А., Седов Е.Н. Полиплоидия в селекции яблони. Орел: ВНИИСПК, 1994. 272 с.
20. Седышева Г.А., Соловьева М.В. Цитологическое, эмбриологическое изучение, исследования особенностей морфогенеза // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Седова Е.Н., Огольцовой Т.П. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 203-218. EDN: YHAPNZ
21. Dar J.A., Wani A.A., Dhar M.K. Morphological, biochemical and male-meiotic characterization of apple (Malus × domestica Borkh.) germplasm of Kashmir Valley // Chromosome Botany. 2015. Vol. 10, № 2. P. 39-49. https://doi.org/10.3199/iscb.10
22. Liu Z., Seiler G.J., Gulya T.J., Feng J., Rashid K.Y., Cai X., Jan C.-C. Triploid Production from Interspecific Crosses of Two Diploid Perennial Helianthus with Diploid Cultivated Sunflower (Helianthus annuus L.) // G3 Genes/Genomes/Genetics. 2017. Vol. 7, № 4. P. 1097-1108. https://doi.org/10.1534/g3.116.036327
23. Singh R., Wafai B.A. Intravarietal polyploidy in the apple (Malus pumila Mill.) cultivar Hazratbali // Euphytica. 1984. Vol. 33. Р. 209-214. https://doi.org/10.1007/BF00022767. EDN: XUJOZS
24. Singh R., Wafai B.A., Koul A.K. Assessment of apple (Malus pumila Mill.) germplasm in Kashmir. III. Cytology of Lal-farashi, Double-Kaseri, Hindwand-rakam, Kichhama-trail, Sabe-alif and Tursh-nawabi // Cytologia. 1985. Vol. 50, № 4. P. 811-823. https://doi.org/10.1508/cytologia.50.811
25. Zakharova V.A., Zakharov M.V., Khilko V.T. Selection of apple-tree on poliploid levels // Faktori eksperimental’noi evolucii organizmiv. 2013. Vol. 13. P. 181-184.
В статье представлены результаты исследования адаптивного потенциала некоторых сортов сливы по отношению к недостатку влаги в условиях Центрального региона России. Исследования проводили на территории Орловской области в летние периоды 2021…2023 гг. в условиях естественной засухи. Растения выращивали в коллекционном саду косточковых плодовых культур по общепринятой для региона технологии возделывания. Объекты исследований – сорта сливы, полученные от скрещиваний китайско-американских сортов с сортами сливы домашней: Евразия 21, Скороплодная, Орловский сувенир, Краса Орловщины, Неженка; контроль – сорт сливы домашней Рекорд. После завершения роста побегов, определяли водоудерживающую способность листьев исследуемых сортов – методом завядания (по Ничипоровичу), состояние устьиц – методом инфильтрации. Статистическая обработка данных – по Доспехову. Выявлены особенности проявления физиологических механизмов устойчивости к засухе в зависимости от генотипа. Количество воды, испарившейся с листьев сортов через 90 мин, варьирует в пределах от 7,07 % (Скороплодная) до 16,54 % (Евразия 21). По способности удерживать воду тканями листа (водоудерживающая способность) сорта сливы располагаются в следующей убывающей последовательности: Рекорд (контроль), Скороплодная, Орловский сувенир, Краса Орловщины, Неженка, Евразия 21. В условиях естественной засухи у листьев всех испытанных сортов нет широко открытых устьиц. Сортов со всеми полностью закрытыми устьицами не выявлено. Устьица листьев характеризуются средней степенью открытости: от 3,33 балла (Евразия 21) до 5,0 баллов (Неженка, Краса Орловщины, Рекорд). По скорости сокращения степени открытости устьиц листьев (через 30 мин) сорта сливы располагаются в следующей убывающей последовательности: Орловский сувенир, Скороплодная, Неженка, Краса Орловщины, Рекорд (контроль), Евразия 21. По комплексу лучших показателей проявления физиологических реакций устойчивости к засухе выделились следующие сорта сливы: Орловский сувенир, Скороплодная, Неженка. Эти сорта целесообразно вовлекать в последующую синтетическую селекцию на устойчивость к засухе.
2. Баширова В.Р., Фещенко Е.М. Агробиологическая оценка адаптивных сортов сливы в условиях оренбургского Приуралья // Плодоводство и ягодоводство России. 2021. № 67. С. 247-253. https://doi.org/10.31676/2073-4948-2021-67-50-98.EDN: VQQQMZ
3. Борзых Н.В., Юшков А.Н., Богданов Р.Е. Оценка засухоустойчивости сортов сливы домашней методом индукции флуоресценции хлорофилла // Journal of Agriculture and Environment. 2023. № 3. https://doi.org/10.23649/jae.2023.31.3.004. EDN: DCGOMH
4. Гончарова Э.А., Магомедова Р.А., Еремин Г.В. Особенности водообмена разных по засухоустойчивости сортов сливы и алычи в период формирования урожая // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1979. Т. 64, № 3. С. 52-71. EDN: YHKRGP
5. Дорошенко Т.Н., Захарчук Н.В., Рязанова Л.Г. Адаптивный потенциал плодовых растений юга России. Краснодар, 2010. 131 с. EDN: QCSJBX
6. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Агропромиздат, 1985. 351 с. EDN: ZJQBUD
7. Епринцев А.Т., Хожаинова Г.Н. Малый практикум по физиологии растений. Учебно-методическое пособие. Воронеж: ВГУ, 2018. 174 с.
8. Заремук Р.Ш. Адаптивный сортимент сливы для экологически устойчивого производства плодов в краснодарском крае // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2013. № 20. С. 1-7. EDN: PXBJDD
9. Ибрагимов К.Х. Проблемы развития садоводства России в условиях меняющегося климата // Вісник Уманського національного університету садівництва. 2014. № 1. С. 105-106. EDN: SJTDGT
10. Колесникова А.Ф., Джигадло Е.Н., Хабаров Ю.И. Результаты селекции сливы за 40 лет // Селекция и сорторазведение садовых культур. Орел, 1995. С. 180-185.
11. Кочубей А.А., Заремук Р.Ш. Исследование засухоустойчивости гибридного материала сливы домашней в условиях юга России // Аграрная наука. 2020. № 6. С. 94-98. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2020-339-6-94-98. EDN: YPAVAT
12. Сатибалов А.В. Влияние глобального потепления на региональный климат и его последствия для плодовых культур // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2021. № 69. С. 101-122. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-3-69-101-122. EDN: DDYYMD
13. Солонкин А.В. Стратегия селекции вишни и сливы для создания сортов в Нижнем Поволжье, возделываемых по современным технологиям: дис. … д-ра. с.-х. наук. Волгоград, 2018. 349 с. EDN: QUEHTA
14. Феськов С.А. Оценка засухоустойчивости сортов сливы домашней // Плодоводство и ягодоводство России. 2014. Т. 40, № 2. С. 247-253. EDN: TBEFKF
15. Jangra M.S., Sharma J.P. Climate resilient apple production in Kullu valley of Himachal Pradesh // International Journal of Farm Sciences. 2013. Vol. 3, № 1. P. 91-98. https://www.indianjournals.com/ijor.aspx?target=ijor:ijfs&volume=3&issue=1&article=013&type=pdf
16. Paudel I., Gerbi H., Wagner Y., Zisovich A., Sapir G., Brumfeld V., Klein T. Drought tolerance of wild versus cultivated tree species of almond and plum in the field // Tree Physiology. 2020. Vol. 40, № 4. P. 454-466. https://doi.org/10.1093/treephys/tpz134
17. Mishko A., Sundyreva M., Zaremuk R., Mozhar N., Lutskiy E. Effects of drought on the physiological parameters of fruit crops leaves // BIO Web of Conferences. 2021. Vol. 34. P. 01009. https://doi.org/10.1051/bioconf/20213401009
18. Gerbi H., Paudel I., Zisovich A., Sapir G., Ben-Dor Sh., Klein T. Physiological drought resistance mechanisms in wild species vs. rootstocks of almond and plum // Trees. 2022. Vol. 36. Р. 669-683. https://doi.org/10.1007/s00468-021-02238-0
19. Fang Y., Xiong L. General mechanisms of drought response and their application in drought resistance improvement in plants // Cellular and Molecular Life Sciences. 2015. Vol. 72. P. 673-689. https://doi.org/10.1007/s00018-014-1767-0
Особенности устойчивости сортообразцов вишни биоресурсной коллекции Всероссийского НИИ селекции плодовых культур к грибным болезням изучали в период с 2018 по 2020 год. В ходе изучений определяли устойчивость генотипов к коккомикозу и монилиозу – двум основным болезням вишни обыкновенной в условиях Орловской области. Были изучены 20 генотипов, среди которых было 14 сортов, одна элитная, три отборных формы селекции ВНИИСПК, и два сорта разного генетического и эколого-географического происхождения. Исследования проводились на базе садовых насаждений отдела селекции, сортоизучения и сортовой агротехники косточковых культур ВНИИСПК. По итогам исследований была выявлена определенная степень зависимости сортообразцов к болезням. Так, уровень устойчивости к коккомикозу выше, чем у контрольного варианта, показали генотипы Подарок учителям, ЭЛС 84847, Новелла, ОС 84735, Муза, Быстринка. Сорта Ostheim Griotte и Уманская скороспелка проявили недостаточную степень устойчивости к данной болезни. В то же время, устойчивыми к монилиозу проявили себя сортообразцы Шоколадница, Орлица, Верея, Путинка, ОС 84854, Подарок учителям, Новелла, Ровесница и Быстринка, а также сорт Превосходная Веньяминова, у которого за весь период исследований вовсе не было выявлено поражения монилиозом. Наименее устойчивыми были сортообразцы Уманская скороспелка и ОС 84595. Проведенные исследования позволили обнаружить ряд генотипов, наиболее устойчивых к обеим рассматриваемым болезням. Это сорта Подарок учителям, Новелла, Быстринка, которые могут быть использованы в селекции на комплексную устойчивость к грибным заболеваниям вишни.
2. Галькова А.А., Гуляева А.А., Берлова Т.Н., Безлепкина Е.В., Ефремов И.Н. Районированные сорта абрикоса селекции ВНИИСПК // Селекция и сорторазведение садовых культур. 2021. Т. 8, № 1-2. С. 20-22. https://doi.org/10.24411/2500-0454-2021-10106. EDN: MIQMDU
3. Горбачева Н.Г., Джигадло Е.Н., Седышева Г.А. Возможности использования в селекционной работе с вишней доноров устойчивости к коккомикозу // Научно-методический электронный журнал «Концепт». 2013. Т. 3. С. 96-100. EDN: RIFDGF
4. Гуляева А.А. Вишня и черешня. Орел: ВНИИСПК, 2015. 52 с. EDN: XYLNPD
5. Джигадло Е.Н., Колесникова А.Ф., Еремин Г.В., Морозова Т.В., Дебискаева С.Ю., Каньшина М.В., Медведева Н.И., Симагин В.С. Косточковые культуры // Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под ред. Е.Н. Седова, Т.П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК, 1999. С. 300-350. EDN: YHAQHP
6. Джигадло Е.Н. Совершенствование методов селекции, создание сортов вишни и черешни, их подвоев с экологической адаптацией к условиям Центрального региона России. Орел: ВНИИСПК, 2009. 268 с. EDN: XZRAEF
7. Джигадло Е.Н. Вишни, которые не болеют // Сады России. 2011. № 3. С. 14-17.
9. Егоров Е.А. Направления и приоритеты сорто-породной селекции садовых культур и винограда на юге России // Плодоводство и виноградарство юга России. 2012. № 18. С. 21-23. EDN: PEVOMX
10. Заремук Р.Ш., Говорущенко С.А. Устойчивые сорта – основа создания адаптивных насаждений вишни в Краснодарском крае // Плодоводство и ягодоводство России. 2010. Т. 24, № 2. С. 311-317. EDN: LLLSLV
12. Круглова Е.А. Болезни плодов и овощей // Студенческая наука – агропромышленному комплексу: научные труды студентов ГГАУ. Владикавказ: ГГАУ, 2017. С. 271-274. EDN: ZTZKOL
13. Кузнецова А.П., Ленивцева М.С. Выделение сортов косточковых культур (род Prunus L.), устойчивых к коккомикозу // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2021. Т. 69. С. 44-53. https://doi.org/10.30679/2219-5335-2021-3-69-44-53. EDN: BEWRZG
14. Лазарев А.И. Коккомикоз вишни // Защита и карантин растений. 2011. № 5. 64 с. EDN: NQXXEZ
15. Левгерова Н.С., Джигадло Е.Н. Использование вишне-черемуховых гибридов для продуктов переработки с повышенной пищевой безопасностью // Проблемы и перспективы отдаленной гибридизации плодовых и ягодных культур: тезисы докладов и сообщений. Мичуринск: ВНИИГиСПР, 2000. С. 64-65.
17. Мищенко И.Г. Тенденции распространения болезней косточковых культур в климатических условиях Краснодарского края // Плодоводство и виноградарство Юга России. 2014. № 29. С. 76-87. EDN: SMGFRV
18. Насонова Г.В. Проблема борьбы с монилиозом на вишне и пути ее решения // Современное садоводство. 2017. № 3. С. 65-73. https://doi.org/10.24411/2218-5275-2017-00018. EDN: OTYINV
19. Никифорова Г.Г., Чмир Р.А. Использование отдаленной гибридизации для получения высокоустойчивых к коккомикозу форм вишни // Проблемы и перспективы отдаленной гибридизации плодовых и ягодных культур: тезисы докладов и сообщений. Мичуринск: ВНИИГиСПР, 2000. С. 38-40.
21. Севастьянова Л.А. Показатели зимостойкости вишни в Татарии и их использование в селекционной работе // Селекция, сортоизучение и агротехника плодово-ягодных культур. Уфа: Башкирский НИИСХ, 1981. С. 34-41.
23. Тихонов А.Г., Каширская Н.Я. Оценка устойчивости сортов вишни к коккомикозу основа современного дифференцированного подхода к системе защиты вишневого сада // Плодоводство и ягодоводство России. 2014. Т. 38, № 2. С. 151-157. EDN: RRTIWB
Оптимальное обеспечение растений калием является необходимым условием формирования урожая плодов. Потребность яблони в калии неодинакова в течение вегетации. Целью исследований было изучение динамики содержания калия в почве и листьях с учетом нагрузки растений урожаем. Исследования проводились в условиях Тамбовской области, в интенсивном саду яблони на привойно-подвойной комбинации Лигол/63-396 в течение 3 лет (2020…2022 гг.). Схема размещения растений 4,5 × 1,2 м (1852 дерева на 1 га). На фоне внесения одной нормы азота и фосфора изучали динамику содержания калия в листьях и в почве в зависимости от нагрузки урожаем при различных дозах калийных удобрений. Содержание обменного калия в почве в течение сезона снижалось в период налива и созревания урожая, особенно в вариантах с высокой урожайностью (в 2020 N20P6K26 – с 133,4 до 115,5 мг/кг почвы, а в 2021 в N20P6K30 – с 138,5 до 122,1 мг/кг почвы). Содержание калия в листьях также заметно снижалось в период роста и развития плодов. На второй год исследований при внесении максимальной нормы калия К30 в почву содержание нутриента в листьях варианта N20P6K30 было ниже (13.08.21 – 1,16 % с.в.; 23.09.21 – 1,01 % с.в.), чем при внесении в почву нормы К26 (13.08.21 – 1,26 % с.в.; 23.09.21 – 1,19 % с.в.). В 2021 году в варианте N20P6K30 урожайность составила 13,4 т/га, которая была значительно выше, чем в варианте N20P6K26 (11,3 т/га), однако в 2022 году максимальная урожайность была отмечена в варианте N20P6K26 (16,8 т/га). Для поддержания оптимального уровня содержания калия в корнеобитаемом слое почвы и в листьях необходимо формировать программу фертигации не только с учетом почвенно-растительной диагностики, но и актуальной нагрузки урожаем.
2. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Агропромиздат, 1985. 351 с. EDN: ZJQBUD
3. Кондаков А.К. Удобрение плодовых деревьев, ягодников, питомников и цветочных культур. Мичуринск, 2006. 254 с.
5. Кузин А.И. Оптимизация системы удобрения яблони в интенсивных садах ЦЧР: дис. … д-ра. с-х. наук. Мичуринск, 2018. 452 с. EDN: POVOKB
6. Кузин А.И., Трунов Ю.В. Особенности почвенно-листовой диагностики калийного питания яблони // Вестник Российской сельскохозяйственной науки. 2016. № 1. С. 16-17. EDN: VZSWCB
7. Леоничева Е.В., Роева Т.А., Леонтьева Л.И., Столяров М.Е. Динамика калия в системе «плоды-листья-побеги яблони» при использовании некорневых подкормок // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2019. № 9. С. 39-46. EDN: IQKGGV
8. Лукин С.В., Васенев И.И., Цыгуткин А.С. Агроэкологическая оценка многолетней динамики содержания обменного калия в черноземах западной части ЦФО // Достижения науки и техники АПК. 2010. № 8. С. 42-46. EDN: MUPIJP
14. Hou W., Trankner M., Lu J., Yan J., Huang S., Ren T., Cong R., Li X. Interactive effects of nitrogen and potassium on photosynthesis and photosynthetic nitrogen allocation of rice leaves // BMC Plant Biology. 2019. Vol. 19. P. 302. https://doi.org/10.1186/s12870-019-1894-8
15. Kuchenbuch R., Claassen N., Jungk A. Potassium availability in relation to soil moisture // Plant and Soil. 1986. Vol. 95. P. 221-231. https://doi.org/10.1007/BF02375074
16. Kuzin A.I., Kashirskaya N.Y., Kochkina A.M., Kushner A.V. Correction of potassium fertigation rate of apple tree (Malus domestica Borkh.) in Central Russia during the growing season // Plants. 2020. Vol. 9, № 10. P. 1366. https://doi.org/10.3390/plants9101366
17. Kuzin A., Solovchenko A. Essential role of potassium in apple and Its Implications for management of orchard fertilization // Plants. 2021. Vol. 10, № 12. P. 2624. https://doi.org/10.3390/plants10122624
18. Leonteva L. Influence of mineral fertilizers on potash nutrition and productivity of columnar apple // BIO Web of Conferences. 2021. Vol. 36. P. 03011. https://doi.org/10.1051/bioconf/20213603011
19. Nachtigall G.R., Dechen A.R. Seasonality of nutrients in leaves and fruits of apple trees // Scientia Agricola. 2006. Vol. 63, № 5. P. 493-501. https://doi.org/10.1590/S0103-90162006000500012
20. Nieves-Cordones M., Al Shiblawi F.R., Sentenac H. Roles and transport of sodium and potassium in plants // The Alkali Metal Ions: Their Role for Life. Metal Ions in Life Sciences / editors A. Sigel, H. Sigel, R. Sigel. Cham: Springer, 2016. Vol. 16. P. 291-324. https://doi.org/10.1007/978-3-319-21756-7_9
21. Roeva T., Leonicheva E., Leonteva L., Stolyarov M. Potassium dynamics in orchard soil and potassium status of sour cherry affected by soil nutritional conditions // Central European Agriculture. 2022. Vol. 23, № 1. P. 103-113. https://doi.org/10.5513/JCEA01/23.1.3313
22. Sadowski A., Kepka M., Lenz F., Engel G. Effect of fruit load on leaf nutrient content of apple trees // Acta Horticulturae. 1995. Vol. 383. P. 67-71. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1995.383.7
23. Szewczuk A., Komosa A. Gudarowska E. Effect of soil potassium levels and different potassium fertilizer forms on yield and storability of ‘Golden delicious’ apples // Acta Scientiarum Polonorum. Hortorum Cultus. 2008. Vol. 7, № 2. P. 53-59. https://czasopisma.up.lublin.pl/index.php/asphc/article/view/3690/2504